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臨床醫學(xué)檢驗技士備考資料:溶血反應的檢測試劑
溶血反應的檢測試劑
(一)補體
檢測血清補體水平或補體活性時(shí)需要從受檢者采血及分離血清。做補體結合試驗時(shí)多采用豚鼠血清作為實(shí)驗用補體的來(lái)源。因為補體在體外極易衰變,所以檢測補體活性的血清標本和作為補體試劑的血清必須新鮮。
受檢者一般做靜脈采血,在動(dòng)物可做心臟采血。血清分離后應及時(shí)使用,最好在當日用完。必須保存時(shí)采用小量分裝的辦法,置-70℃下可保存數月,避免反復凍融。凍干制品可長(cháng)期保存,但其活性都不同程度地比新鮮血清降低。
以豚鼠血清作補體來(lái)源時(shí),應考慮到個(gè)體差異。為了確保血清中補體的有效活性,必須取3只以上豚鼠的血清混合后使用。
(二)綿羊紅細胞
從綿羊頸靜脈無(wú)菌采血,抽出血液后立即小心地注入放有玻璃珠的無(wú)菌干燥三角燒瓶中,充分旋搖15~20min,以除去纖維蛋白。也可將羊血與等量或2倍量的Alsever血液保存液混合,既有抗凝作用,又適于儲存;分裝后置4℃,可使用3周。
實(shí)驗前,取適量抗凝血,加入8~10倍的生理鹽水,輕輕混勻后2000r/min離心5min;棄上清,沉淀的紅細胞用生理鹽水再洗一次,這時(shí)上清為無(wú)色澄清,如顯紅色說(shuō)明有溶血現象,應更換新鮮羊血;第三次用緩沖液洗滌,棄上清,取壓積紅細胞用緩沖液配制SRBC懸液,使用濃度一般為2%~5%。為使紅細胞濃度標準化,可吸取少量紅細胞懸液,中入20~30倍的稀釋液中,在542nm波長(cháng)比濁,以吸光度為標準調整紅細胞濃度。
(三)溶血素
溶血素即抗綿羊紅細胞抗體,多是以綿羊紅細胞免疫家兔而得到兔抗血清。一般沒(méi)有必要進(jìn)一步提純抗體,但在試驗前需先進(jìn)行加熱56℃30min或60℃3min以滅活補體。
由于補體溶血試驗及補體結合試驗均是比較精密的試驗,其結果與溶血素的效價(jià)有關(guān),所以試驗需要滴定溶血素效價(jià);在制備抗血清的過(guò)程中,于動(dòng)物采血前和分離抗血清后也需要滴定溶血素效價(jià)。
1.溶血素稀釋稀釋溶血素時(shí),要先對效價(jià)有個(gè)大概的估計,以便確定稀釋度的范圍。動(dòng)物采血前滴定時(shí)稀釋范圍要稍大些,實(shí)驗前的滴定便以原先的記錄作為參考(溶血素的效價(jià)多在數千單位以上)。溶血素稀釋一般不采用連續倍比稀釋法,因為稀釋到最后時(shí)跨度太大,不容易確定單位。為了便于操作,現舉例按表14-1配制不同稀釋度的溶血素。
2.效價(jià)滴定將稀釋好的溶血素及其他試劑按表14-2所示逐步加入到各試管中,放置37℃水浴,不要蓋上水浴箱的蓋子,以免蓋子上冷凝的水蒸氣滴入試管內引起非補體性溶血。30min后取出觀(guān)察結果。
溫育反應后,完全溶血的試管內液體紅色透明,放置一段時(shí)間后管底無(wú)細胞沉淀,離心后可見(jiàn)少許細胞碎渣。不溶血的管內液體渾濁;放置后可見(jiàn)紅細胞沉淀,上清無(wú)色透明。不同程度的不完全溶血介于兩者的中間變化態(tài)。
按照以上標準,以產(chǎn)生完全溶血的最高稀釋管為最大有效反應管,以該管的溶血素稀釋倍數為溶血素產(chǎn)效價(jià)。例如表14-2中的溶血素效價(jià)應為1:4000;在1:4000稀釋的情況下,反應液中所含溶血素的的量為1U/ml。
做補體活性測定或補體結合試驗時(shí),一般使用2U/ml溶血素(在本例做1:2000稀釋),與SRBC懸液等體積混合。
(四)稀釋緩沖液
磷酸緩沖液或巴比妥緩沖液等均可用于溶血試驗,pH值應調至7.2~7.4之間。另加入適量氯化鈉以保持等滲,并適當地加入一些鈣離子和鎂離子,這是補體活化所不可缺少的。有的配方還加入0.1%的明膠以使蛋白溶液穩定;加入0.01%NaN3可以防腐,利于較長(cháng)時(shí)間保存。
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